الأسبوع 2 من تطور الجنين: الهيكل، والسمات المورفوجينية ، والأهمية السريرية والتشريحية
تطور الجنين البشري في اليوم 14: بداية المعدة، وتشكيل طبقات جرثومية، السلى والمشيماء. بالتفصيل حول التنظيم الجزيئي و 5-7 مراحل كارنيجي.
التخصصات
أمراض الدمالأمراض المعديةالمسالك البوليةجراحة العظامطب الأسنانطب الأطفالطب الأنف والأذن والحنجرةطب الأورامطب الأوعية الدمويةطب التوليدطب الجلدطب الجهاز العصبيطب الجهاز الهضميطب الرئةطب الرضوحطب العيونطب الغدد الصمطب القلبطب الكبدطب النساءعلم الأجنةعلم الأنسجةعلم التخديرعلم وظائف الأعضاءهذه المقالة لأغراض إعلامية فقط
يتم توفير محتوى هذا الموقع الإلكتروني، بما في ذلك النصوص والرسومات والمواد الأخرى، لأغراض إعلامية فقط. وليس المقصود منه تقديم المشورة أو التوجيه. فيما يتعلق بحالتك الطبية أو علاجك الخاص، يرجى استشارة مقدم الرعاية الصحية الخاص بك.
إن تطور الجنين البشري خلال الأسبوع الأول هو عملية بيولوجية معقدة تبدأ باندماج الأمشاج وتنتهي بالزرع الناجح للكيسة الأريمية في جدار الرحم. تتناول هذه المقالة بالتفصيل الآليات الجزيئية للإخصاب ، والتسلسل الزمني لتفتيت الخلايا يوما بعد يوم ، والأنظمة الحديثة للتقييم المورفولوجي لجودة الكيسة الأريمية، بالإضافة إلى المراحل الرئيسية لزرعها في بطانة الرحم.
تبدأ عملية الإخصاب عندما تلتقي الأمشاج في الجزء الأمبولي من قناة فالوب، حيث تتغلب الحيوانات المنوية على عدة حواجز للاندماج مع البويضة من الدرجة الثانية.
في غضون 18-24 ساعة بعد الاندماج، تذوب النواة قذائفها النووية، وتصطف الكروموسومات على مغزل تقسيم واحد، لتكمل الإخصاب الحقيقي-تكوين زيجوت ثنائي الصبغيات (46، ХХ أو 46 ، ХУ).
تمثل هذه اللحظة بداية التطور الجنيني ، ويتم التحكم في الأقسام الأولى بواسطة الحمض النووي الريبي للأم والبروتينات المتراكمة في البويضة، بينما يتم تنشيط الجينوم الجنيني فقط في مرحلة 4-8 خلايا.
تتضمن عملية التطور الجنيني البشري في المراحل المبكرة مراحل متتالية من التكسير والضغط وتكوين الكيسة الأريمية.
بعد إخصاب البويضة بواسطة الحيوانات المنوية، تتكون البيضة الملقحة من مجموعة ثنائية الصبغيات من الكروموسومات (2n) ومحتوى الحمض النووي رباعي الصبغيات (4c). في هذه المرحلة، يتم الانتهاء من الانقسام الانتصافي الثاني، والذي يصاحبه:
يحدث الانقسام الانقسامي الأول للزيجوت بعد 24-30 ساعة من الإخصاب ، مما يؤدي إلى تكوين 2 بلاستوميرات. في هذه المرحلة من التطور، يجب على علماء الأجنة تقييم:
تتميز هذه المرحلة بالانقسام غير المتزامن: حوالي 30 ٪ من الأجنة لها توزيع غير متساو للسيتوبلازم بين الأريميات، والذي قد يكون بسبب جودة البويضة أو ميزات تنشيط الجينوم الجنيني. وفي الوقت نفسه ، يبدأ الانتقال بين الأم واللقاح (مزت ، الانتقال بين الأم واللقاح)، حيث تتحلل مرناس الأمهات وينشط النسخ الجيني للجنين تدريجيا، مما يدل على انتقال السيطرة التنموية من العوامل الأم إلى تلك الجنينية.
في اليوم 2، يكون الجنين في مرحلة مبكرة من التفتت ويجب أن يتكون عادة من 2-4 بلاستوميرات (خلايا). يتضمن التقييم عدة معايير رئيسية:
تجدر الإشارة إلى أن المبلغ يجب أن يتوافق مع وقت التطوير – في المتوسط ، 1 تقسيم كل 24 ساعة.
أفضل الأجنة في هذه المرحلة لديها:
في اليوم 2-3 ، يخضع الجنين للانقسامات الانقسامية 2 و 3 ، ليصل إلى مرحلة 4-8 خلايا. خلال هذه الفترة ، يتم تنشيط جينوم الزيجوت (زغا ، تنشيط الجينوم الزيجوت ZGA, zygotic genome activation) ، حيث، في مرحلة 4-8 بلاستوميرات (~يوم 3) ، يبدأ التعبير النشط للجينات الجنينية ، بما في ذلك عوامل النسخ الرئيسية (أكتوبر 4 ، نانوغ) المسؤولة عن الحفاظ على تعدد القدرات ومزيد من التطوير. في موازاة ذلك ، يتم إنشاء التفاعلات اللاصقة الأولى بين المتفجرات ، بوساطة بروتينات التصاق الخلية ، والتي تعزز الانضغاط في المراحل اللاحقة.
في اليوم 3، يكون الجنين في مرحلة التفتت (6-8 خلايا). يشمل التقييم:
التطور المثالي على د3: 8 خلايا (6-10 مقبولة).
| التقييم | تجزئة | التنبؤ بالمرض |
|---|---|---|
| 1 (ممتاز) | <10% | إمكانات زرع عالية |
| 2 (جيد) | 10–25% | فرص معتدلة ، يعتمد على معايير أخرى |
| 3 (مرض) | 25–50% | إمكانات منخفضة، تشوهات الكروموسومات المحتملة |
| 4 (سيئة) | >50% | فرص منخفضة للغاية، وعادة ما تكون غير قابلة للتحويل |
في اليوم 3-4 ، يصل الجنين إلى مرحلة التوتية ، والتي تتميز بزيادة عدد الخلايا إلى 16-32 بسبب الانقسامات الانقسامية المستمرة. حدث مهم من هذه الفترة هو ضغط ، عملية التقارب بلاستومر بوساطة اي-كادرين (CDH1)، الأمر الذي يؤدي إلى تشكيل الاتصالات بين الخلايا الكثيفة اللازمة للتجويف لاحق. في الوقت نفسه ، يبدأ التمايز الخلوي ، ويتجلى ذلك من خلال الانقسام إلى خلايا داخلية (كتلة الخلايا الداخلية المستقبلية، ICM) والخلايا الخارجية (تروفيكتوديرم المستقبل ، TE).
تقييم التوتية أو الكيسة الأريمية المبكرة في اليوم 4يشمل:
| كود | الفئة | الوصف |
|---|---|---|
| مور | مورولا (غير مضغوط) | الخلايا مرئية بشكل منفصل ، لكنها تبدأ في التقارب. |
| cMor | مورولا المدمجة | تندمج الخلايا بإحكام ، ولا يمكن تمييز الحدود تقريبا |
| EB | الكيسة الأريمية المبكرة | ظهور تجويف صغير (القيلة الأريمية<50%) |
في اليوم الخامس تتكوّن بلاستوسيست مبكّر، ويتسم بوجود عملية التكوّن التجويفي، أي تشكّل البلاستوكويل (جوف مملوء بسائل)، نتيجة النقل النشط للأيونات (آلية تعتمد على Na+) وتفعيل قنوات أكوابورينية.
في تلك الفترة نفسها، تنتهي تمايز خطوط الخلايا: TE (التروفكتوديرم) يشكل الطبقة الخارجية المسؤولة عن تكوين الهياكل خارج الجنينية، بما في ذلك المشيمة، وتتحول كتلة الخلايا الداخلية (ICM) إلى مصدر للإيمبريوبلاست الذي يمنح بداية الأنسجة الجنينية.
كما يتم تنشيط عوامل النسخ الأساسية التي تنظم التطور اللاحق للجنين.
بحلول اليومين الخامس والسادس، يصل البلاستوسيست إلى المرحلة النهائية من التطور قبل الزرع.
خلال هذه المرحلة، يتوسع التجويف البلاستوسي وتتخفّف سماكة التروفكتوديرم، وهو ما يساعد في الخروج اللاحق للبلاستوسيست من الغلاف المحيط به.
تنقسم الكتلة الخلوية الداخلية إلى فئتين فرعيتين: الإبي بلاست، وهو مصدر أنسجة الجنين، والهيبو بلاست، وهو سلف ميزوديرم خارج الجنين.
المرحلة النهائية هي خروج البلاستوسيست من الغشاء الشفاف (Zona pellucida)، وتُعرف هذه العملية بالهتشينغ، وهي ضرورية للزرع الناجح في بطانة الرحم.
تصنيف البلاستوسيست في علم الأجنة البشرية يعتمد على معايير مورفولوجية تُقَيَّم وفق نظام غاردنر وسكولكرافت (1999)، الذي يُستخدم في تقنيات الإنجاب المساعدة لاختيار الأجنة الأكثر صلاحية للحياة قبل نقلها إلى الرحم.
يعكس مدى تطور التجويف البلاستوسي واستعداد البلاستوسيست للهتشينغ، أي الخروج من الغشاء الشفاف المحيط به.


الجنين في المستقبل (وليس تروفيكتوديرم). تقييم كثافة الخلايا والاكتناز:
المشيمة المستقبلية والهياكل خارج الجنينية. يتم تقييم التنظيم الخلوي:


هناك أيضًا تصنيف للبلاستوسيست وفقًا لـ ESHRE (European Society of Human Reproduction and Embryology).
هذا التصنيف هو نهج حديث وموحد لتقييم جودة الأجنة في مرحلة الكيسة الأريمية.
يتضمن النظام ثلاث معلمات رئيسية:
يعكس تطور القيلة الأريمية والرغبة في الفقس:
كلما ارتفعت المرحلة (4-6) ، كانت إمكانات الزرع أفضل.
ICM – هذه هي الجنين المستقبلي (الخلايا الجرثومية).
أفضل درجة هي A، أسوأ درجة هي C.
TE وهي تشكل المشيمة والأنسجة خارج الجرثومية.
والفرق الرئيسي بين تصنيف إيشر ESHRE هو نهج أكثر توحيدا ، وهذا التصنيف أكثر شيوعا في أوروبا، على عكس تصنيف غاردنر Gardner، الذي يستخدم في الولايات المتحدة، ولكن مبادئ تقييم كلا التصنيفين متشابهة.
المرحلة التالية هي الزرع الناجح للكيسة الأريمية نتيجة للتفاعل المنسق بدقة بين الأنظمة الجنينية والأم، بما في ذلك العمليات المتسلسلة للفقس والالتصاق والغزو وتشكيل الهياكل الأولية للمشيمة، التي تنظمها آليات جزيئية معقدة. يبدأ زرع الكيسة الأريمية في بطانة الرحم في اليوم 5-7 من تطور الجنين.
يتم زرع الكيسة الأريمية على عدة مراحل:
المرحلة الأولية هي إطلاق تفقيس الكيسة الأريمية من القشرة اللامعة (المنطقة الشفافة)، والتي يتم توفيرها من خلال كل من النشاط الأنزيمي (إفراز بروتياز السيرين، بما في ذلك ST6 ، وإنزيمات ليسين – كاثيبسين وبلازمين بواسطة الأديم الظاهر) والعوامل الميكانيكية (تقلصات الكيسة الأريمية وزيادة حجم القيلة الأريمية). بعد إطلاقه من القشرة اللامعة، يحصل الأديم الظاهر المكشوف على فرصة الاتصال المباشر مع بطانة الرحم.
يتم التوسط في عملية التصاق الكيسة الأريمية ببطانة الرحم من خلال تفاعلات جزيئية معقدة. الإنتغرينات (αVβ3, α4β1) على سطح تروفيكتوديرم تلعب دورا رئيسيا، والتي ترتبط بروابط بطانة الرحم المقابلة، فضلا عن تفاعل الأرومة الغاذية ل-سيليكتين مع أوليغوساكاريدس من ظهارة بطانة الرحم. جانب مهم هو الانخفاض المحلي في التعبير عن الميوسين (MUC1) في بطانة الرحم، مما يسهل الاتصال بين الجنين وأنسجة الأم.
يؤدي التمايز اللاحق للأديم الغاذي إلى تكوين طبقتين مختلفتين وظيفيا: الأرومة الغاذية الخلوية (الطبقة التكاثرية الداخلية التي تتميز بالتعبير عن علامات EGFR وKi-67) و الأرومة الغاذية المخلوية (الطبقة الغازية الخارجية).
يحدث تكوين الأرومة الغاذية المخلوية عن طريق الاندماج الخلوي للأرومة الغاذية الخلوية بوساطة بروتينات الفيروسات القهقرية الذاتية Syncytin-1 و -2. يتم توفير النشاط الغازية من الأرومة الغاذية المخلوية عن طريق إفراز ميتالوبروتيناس مصفوفة (MMP-2, MMP-9) ، والتي تدمر المصفوفة خارج الخلية ، والتعبير عن إنتغرينز (α1β1, α5β1) ، والتي تعزز الهجرة إلى سدى بطانة الرحم ، والتفاعل مع الخلايا المتساقطة من خلال HLA-G, ، مما يضمن التسامح المناعي.
بالتوازي مع العمليات من جانب الجنين، تحدث تغييرات كبيرة في بطانة الرحم، والمعروفة باسم التنقيط – تحول الخلايا اللحمية تحت تأثير البروجسترون. تتميز الخلايا الساقطة بزيادة في الحجم، وتراكم الجليكوجين والدهون، فضلا عن تغيير في الملف الإفرازي (الافراج IGFBP-1, PRL, IL-11). جانب مهم هو تشكيل التحمل المناعي، بما في ذلك كبح نشاط الخلايا NK من خلال HLA-E/G، وتنظيم الماكروفاجات (مع تفوق نمط M2)، وتفعيل الخلايا التنظيمية التائية (FoxP3+).
يبدأ السنكسيتيوم الغاذي بإفراز هرمون الغدد التناسلية المشيمية (HCG) في اليوم السابع أو الثامن من التطور، وهو يلعب دورًا رئيسيًا في دعم الحمل.
هرمون الحمل البشري (hCG) لا يحفز فقط الجسم الاصفر على مواصلة إفراز البروجسترون من خلال الارتباط بمستقبلات الهرمون اللوتيني، بل يشارك أيضًا في تكوين الأوعية الدموية (عن طريق تنشيط عامل نمو بطانة الأوعية الدموية VEGF في بطانة الرحم) وتعديل الاستجابة المناعية (بتحويل التوازن نحو استجابة Th2).
1. كم من الوقت تستغرق عملية الإخصاب؟
2. ما هو 2PN ولماذا هو مهم لتقييم البيضة الملقحة؟
3. كم عدد الخلايا التي يجب أن يمتلكها الجنين في اليوم 3؟
4. ماذا يعني تجزئة الجنين وما هو المستوى المقبول؟
ما هي آلية عملية التكثف الخلوي في اليوم الرابع؟
ما هو التفقيس ومتى يحدث؟
كيف يُفسر تصنيف البلاستوسيست 4AA؟
8. متى يبدأ إنتاج HCG؟
قائمة المراجع
1.
VOKA 3D Anatomy & Pathology – Complete Anatomy and Pathology 3D Atlas [VOKA للتشريح وعلم الأمراض ثلاثي الأبعاد — أطلس ثلاثي الأبعاد متكامل للتشريح وعلم الأمراض] [Internet]. VOKA 3D Anatomy & Pathology [VOKA للتشريح وعلم الأمراض ثلاثي الأبعاد].
الإتاحة من: https://catalog.voka.io/
2.
Embryology AS in RM and ESIGO, Balaban B, Brison D, Calderon G, Catt J, Conaghan J, Cowan L, Ebner T, Gardner D, Hardarson T, Lundin K, Magli MC, Mortimer D, Mortimer S, Munne S, Royere D, Scott L, Smitz J, Thornhill A, Van Blerkom J, Van Den Abbeel E. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Human Reproduction [Internet]. 2011 Apr 18;26(6):1270–1283.
متوفر عبر: https://doi.org/10.1093/humrep/der037
3.
Gardner D.K., Schoolcraft W.B.. Culture and transfer of human blastocysts. Curr Opin Obstet Gynecol. 1999 Jun;11(3):307-11. doi: 10.1097/00001703-199906000-00013. PMID: 10369209.
4.
The Working Group on the update of the ESHRE/ALPHA Istanbul Consensus , Giovanni Coticchio, Aisling Ahlström, Gemma Arroyo, Basak Balaban, Alison Campbell, Maria José De Los Santos, Thomas Ebner, David K Gardner, Borut Kovačič, Kersti Lundin, M Cristina Magli, Saria Mcheik, Dean E Morbeck, Laura Rienzi, Ioannis Sfontouris, Nathalie Vermeulen, Mina Alikani, The Istanbul consensus update: a revised ESHRE/ALPHA consensus on oocyte and embryo static and dynamic morphological assessment,, Human Reproduction, Volume 40, Issue 6, June 2025, Pages 989–1035.
5.
Cockburn K., Rossant J. Making the blastocyst: lessons from the mouse. J Clin Invest. 2010 Apr;120(4):995-1003. doi: 10.1172/JCI41229. Epub 2010 Apr 1. PMID: 20364097; PMCID: PMC2846056.
6.
Boroviak T, Nichols J. Primate embryogenesis predicts the hallmarks of human naïve pluripotency. Development [Internet]. 2017 Jan 15;144(2):175–186.
Available from: https://doi.org/10.1242/dev.145177
7.
Niakan K. K., Eggan K. Analysis of human embryos from zygote to blastocyst reveals distinct gene expression patterns relative to the mouse. Dev Biol. 2013 Mar 1;375(1):54-64. doi: 10.1016/j.ydbio.2012.12.008. Epub 2012 Dec 19. PMID: 23261930.
8.
Schulz KN, Harrison MM. Mechanisms regulating zygotic genome activation. Nature Reviews Genetics [Internet]. 2018 Dec 20;20(4):221–234.
Available from: https://doi.org/10.1038/s41576-018-0087-x
9.
Vento-Tormo R, Efremova M, Botting RA, Turco MY, Vento-Tormo M, Meyer KB, Park JE, Stephenson E, Polański K, Goncalves A, Gardner L, Holmqvist S, Henriksson J, Zou A, Sharkey AM, Millar B, Innes B, Wood L, Wilbrey-Clark A, Payne RP, Ivarsson MA, Lisgo S, Filby A, Rowitch DH, Bulmer JN, Wright GJ, Stubbington MJT, Haniffa M, Moffett A, Teichmann SA. Single-cell reconstruction of the early maternal–fetal interface in humans. Nature [Internet]. 2018 Nov 8;563(7731):347–353.
Available from: https://doi.org/10.1038/s41586-018-0698-6
10.
Turco MY, Moffett A. Development of the human placenta. Development [Internet]. 2019 Nov 15;146(22).
Available from: https://doi.org/10.1242/dev.163428
11.
Norwitz ER, Schust DJ, Fisher SJ. Implantation and the Survival of Early Pregnancy. New England Journal of Medicine [Internet]. 2001 Nov 8;345(19):1400–1408.
Available from: https://doi.org/10.1056/nejmra000763
12.
Wang H, Dey SK. Roadmap to embryo implantation: clues from mouse models. Nature Reviews Genetics [Internet]. 2006 Feb 17;7(3):185–199.
Available from: https://doi.org/10.1038/nrg1808
13.
Aplin JD, Ruane PT. Embryo–epithelium interactions during implantation at a glance. Journal of Cell Science [Internet]. 2017 Jan 1;130(1):15–22.
Available from: https://doi.org/10.1242/jcs.175943
14.
Okae H, Toh H, Sato T, Hiura H, Takahashi S, Shirane K, Kabayama Y, Suyama M, Sasaki H, Arima T. Derivation of Human Trophoblast Stem Cells. Cell Stem Cell [Internet]. 2017 Dec 14;22(1):50-63.e6.
Available from: https://doi.org/10.1016/j.stem.2017.11.004
15.
ESHRE Working Group on Recurrent Implantation Failure, D Cimadomo, M J de los Santos, G. Griesinger, G. Lainas, N. Le Clef, D. J. McLernon, D. Montjean, B. Toth, N. Vermeulen, N. Macklon, ESHRE good practice recommendations on recurrent implantation failure, Human Reproduction Open, [Internet]. Volume 2023, Issue 3, 2023, hoad023.
Available from: https://doi.org/10.1093/hropen/hoad023
اجعل VOKA مصدرك المفضل
اطلع على المزيد من مقالات VOKA في بحث Google
تلخيص المقالة باستخدام الذكاء الاصطناعي
اختر مساعدك المفضل المستند إلى الذكاء الاصطناعي:
تم نسخ الرابط إلى الحافظة بنجاح
شكراً لك!
تم إرسال رسالتك!
سيتصل بك أخصائيونا بوقت قصير. إذا كان لديك أسئلة إضافية، فيرجى الاتصال بنا عبر البريد الإلكتروني: info@voka.io